Как работает тнвд: Устройство ТНВД

Содержание

Топливный насос высокого давления (ТНВД)

Заводские параметры стабильной работы автомобиля ориентированы на использование в процессе эксплуатации топлива высокого качества. Но реальность такова, что на заправочных станциях часто обнаруживается горючее с измененным составом. Посторонние взвеси оказываются в топливной структуре и провоцируют сбивчивую деятельность дизеля. Особенно чувствительным к таким ситуациям агрегатом выступает ТНВД.

Что такое ТНВД

Топливный насос высокого давления – ведущий технический агрегат системы впрыска. Ему доверены две главные обязанности: нагонять четко дозированную часть топлива и регламентировать точное время старта впрыскивания. Основную роль в этих процессах играет плунжерная пара, формирующаяся из двух компонентов:

Плунжер – металлический поршень, совершающий движения вперед-назад.
Втулка – полый цилиндр из металла с отверстиями для поступления и вывода топлива.

Подготавливается плунжерная пара на высокоточных станках. Это обязательное условие для осуществления полной герметичности узлового комплекта. Зазор промежду поршнем и втулкой не должен превышать 3 мкм. Поверхности деталей тщательным образом обрабатываются для обеспечения необходимой плотности прилегания.

Не только герметичность имеет решающее значение в производстве плунжерной пары. Детали узла испытывают на себе значительное давление и мощные силовые нагрузки. Чтобы добиться долговечности, блок выполняют из стали высшей марки и применяют технологию сверхточной обработки металла.

Принцип работы ТНВД

По техническим спецификам и особенностям действия выделяется три варианта ТНВД – рядный, распределительный и магистральный. Для первого характерна совокупность действий, когда топливо доводится к цилиндрам различными парами плунжеров. Второй вид распространяет горючее подряд по цилиндрам единственной парой плунжеров. Магистральный вариант создан для инновационной системы Common Rail.

Рядный

Численность плунжерных пар согласуется с количеством цилиндров. Местоположение плунжерного блока в насосе именно там, где размещаются русла для внедрения и отведения топлива. Проходит плунжер в противное направление от кулачкового вала, соответственно связанного приводом с коленчатым валом мотора. Крепкие спирали равномерно придавливают плунжеры к кулачкам.

Когда стартует продвижение кулачкового вала, кулачок сходится с толкателем плунжера. При сдвиге плунжера по втулке, в конкретном порядке прикрываются прорези для впуска и выпуска. Возникает надлежащее давление, способное распахнуть клапан нагнетания. Это позволяет обратить поток горючего по топливному руслу к нужной форсунке.

Четко отрегулировать точный момент подачи и запланированную дозу топлива можно двумя способами – механическим или электронным путем. Процесс реализовывается посредством разворота плунжера во втулке. По верхнему контуру плунжера произведен наклон, позволяющий при повороте четко регулировать выдачу топлива.

Перемена скорости обращения коленчатого вала силового агрегата требует корректировку начала введения горючего. Механическим способом этот процесс можно выполнить при содействии центробежной муфты, которая располагается на кулачковом валу. Когда нарастает скорость вращения коленвала, утяжеляющие элементы внутри муфты разбегаются под влиянием сил инерции, а кулачковый вал выполняет поворот. Ранний впрыск горючего происходит при наращивании оборотов двигателя, а поздний – при падении.

Распределительный

Присутствует только один плунжер, который обихаживает все цилиндры силового агрегата. Распределительный вариант насоса выделяется малыми габаритами и легким весом. При этом он гарантирует стабильную равномерность подачи топлива. Так как износостойкость контактирующих деталей не имеет особенных показателей, то этот вид насоса используется исключительно в легковом транспорте.

Существует несколько конфигураций кулачкового привода в распределительных ТНВД:

торцевой;
внутренний;
внешний.

Первые два варианта имеют более продолжительный срок эксплуатации, потому что в этих конструкциях не существует повышенной нагрузки на узловые элементы привода.

Главным звеном считается плунжер-распределитель. Именно он совершает все виды необходимых движений, гарантируя ввод и распространение горючего по цилиндрам. Кулачковая шайба вращается, обходя статичное кольцо по роликовому приспособлению, и запускает возвратно-поступательный ход плунжера. В начальное расположение плунжерный блок приходит под влиянием спирали.

Контроль количества впускаемого горючего реализуется механикой или электронным способом. В первом случае регулятор запускает центробежную муфту с утяжелителями, и она осуществляет воздействие на специальный дозатор. Второй вариант подразумевает менять величину топливной подачи с помощью электромагнитного клапана.

Магистральный

Технические специалисты компании Bosch создали инновационную систему топливной магистрали, действенность ее выражается в подношение топлива на распылительные устройства от единой рампы. Заслуга системы в том, что при ней уменьшается расход горючего, снижается ядовитость выработанных газов и становится тише работа двигателя. Основным плюсом Common Rail считается вариативность при дозированной выдачи топлива, потому как процессы формирования давления и впрыска разделены.

Магистральный насос был сконструирован конкретно под систему Common Rail, и практикуется для накачивания горючего в топливную помпу. Он обладает особой способностью формировать усиленное давление, по сравнению с иными установками. Согласно технологии насос комплектуется одним, двумя или тремя необходимыми плунжерными блоками. Запускают четкий двигательный ход всех задействованных плунжеров кулачковый вал или шайба. Спускание плунжера вертикально вниз проделывает возвратный элемент.

Впускной канал захлопывается, когда плунжер движется наверх и давление в камере растет. Горючее поступает с подачи клапана точного дозирования – в начальной позиции он открыт, а по точному оповещению ЭБУ прикрывается на конкретную величину. Таким образом, свершается контроль над точным количеством топлива, попадающего в компрессионную камеру.

Ремонт ТНВД

Технические разработчики автомобилей непрерывно работают над созданием абсолютно совершенных насосов, осуществляют испытательные опыты с агрегатами в собранном виде и каждых элементов по отдельности. Но от регулярного загрязнения плунжеров избавиться не удается. Виной тому – топливо не надлежащей чистоты, представляющее опасность для сверхмалых допусков в концепции плунжеров.

Водители могут сами определить, когда пора ехать в Дизель-Моторс и доверить специалистам ремонт ТНВД. Вот на какие явные признаки следует обратить внимание:

неожиданно автомобиль стал потреблять значительно больше топлива, чем раньше;
возникли проблемы с запуском силового агрегата;
из выхлопной трубы стал валить черный дым;
отработанные газы приобрели едкий запах;
постоянно проскальзывает ремень в механизме распределения газов;
стало подтекать горючее;
вдруг резко упало значение мощности мотора;
на холостых оборотах стабильность двигателя начала сбоить.

Самостоятельное устранение неполадок приведет к катастрофическим последствиям в функционировании двигателя. Для определения неисправностей необходимо специальное диагностическое оборудование и ресурсы программного обеспечения. Доверьте ремонт специалистам Дизель-Моторс, и вы получите качественно исполненную работу!

Почему клиенты предпочитают обращаться к нам:

Мы предлагаем полный набор услуг по обслуживанию и ремонту дизельных автомобилей.
Наши технические специалисты имеют профессиональные навыки по всем видам работ и выполняют ремонт любой сложности.
Мастера систематически повышают квалификационный уровень в области инновационных разработок.
Мы строго соблюдаем рекомендации заводов-изготовителей по соответствию работ установленному регламенту.
Продуманные схемы четкой логистики позволяют быстро удовлетворить потребности в запчастях и расходных материалах.
Мы не предлагаем клиенту лишние услуги, ориентируемся исключительно на необходимый ремонт.
Всегда подробно консультируем водителей об этапах и стоимости предстоящих работ.

Системы подачи топлива

Форма поиска

Поиск

Вы здесь

Главная → Топливная система двигателя → Системы подачи топлива

После того как дизельный мотор получил систему прямого впрыска, компания создала схему, контролирующую впрыск, она очень быстро распространилась по всему миру из-за своей надежности и простоты. Такие системы классифицируют по видам насосов высокого давления и имеют определенные типы, зависимо от задач, которые стоят перед мотором.

Насосы компании Бош первого поколения СР1 начинают работать при помощи вала, который соединен с распределительным валом мотора. Имеют два подвида СР1К, который имеет небольшой размер и CP1S, который имеет стандартные размеры, но при этом оснащен регулировкой давления, она размещается на корпусе насоса. Данную систему можно охарактеризовать тем, что она имеет погружной топливный электронасос, подающий топливо на ТНВД. Производительность и давление в таких насосах меняется зависимо от марки машины. Наиболее частые причины обращения в ремонт ТНВД типа СР1 — течь по крышкам секций, возникающая из-за износа уплотняющей поверхности нагнетательный клапан — секция.

Система СР2 является 2-м поколением и ее начали использовать в 2001 году. Отличается она от первого поколения тем, что с той стороны, с которой подается топливо, располагается клапан, контролирующий объем топлива, которое подается в рампу из насоса. Данную конструкцию первый раз использовали на вид СР3, но ее также добавили и к СР1 для того, чтобы увеличить уровень производительности насоса. Она дает возможность повысить уровень эффективности насосов, понижает температуру подаваемого топлива и увеличивает давление, которое создается при подаче.

Система СР3 была создана в 2003 году и таким образом заняла место 3-го поколения систем от компании Бош, разработанных для прямого впрыска топлива. Данная система очень схожа с СР1 и СР2. Но при этом здесь использована новейшая технология контроля давления. Управляется оно не на самой линии давления, а с той стороны, где подается топливо в ТНВД. Потому здесь применяется новая деталь клапан, контролирующий объем топлива, которое подается в насос. Наиболее частые причины ремонт ТНВД типа СР3 — нарушение работы дозирующего блока, перепускного клапана.

Когда ужесточили требования токсичности и также уменьшили размеры узлов и увеличили уровень мощности в 2007 году выпустили новое поколение СР4. Главными отличиями выступает уменьшение размера и возможность увеличить давление до 2000 бар.

Видео — Принцип и устройство ТНВД

Отслеживание происхождения двух признаков, связанных с белком оболочки Tombusviridae: подавление молчания и выявление HR у видов Nicotiana

1. Qu F., Morris T.J. Супрессоры сайленсинга РНК, кодируемые вирусами растений, и их роль в вирусных инфекциях. ФЭБС лат. 2005; 579: 5958–5964. doi: 10.1016/j.febslet.2005.08.041. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

2. Scholthof H.B. P19, закодированный tombusvirus: от неуместности к элегантности. Нац. Преподобный Микробиолог. 2006; 4: 405–411. doi: 10.1038/nrmicro1395. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

3. ДеРонд Д., Буттербах П., Кормелинк Р. Доминантная устойчивость к вирусам растений. Фронт. Растениевод. 2014;5:307. doi: 10.3389/fpls.2014.00307. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

4. Mandadi K.K., Scholthof K.-B.G. Иммунные реакции растений на вирусы: как вирус вызывает заболевание? Растительная клетка. 2013; 25:1489–1505. doi: 10.1105/tpc.113.111658. [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

5. Зверева А.С., Пуггин М.М. Молчание и врожденный иммунитет в защите растений от вирусных и невирусных патогенов. Вирусы. 2012; 4: 2578–259.7. doi: 10.3390/v4112578. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

6. Leisner S.M., Schoelz J.E. Присоединение к толпе: интеграция белков вирусов растений в более широкий мир эффекторов патогенов. Анну. Преподобный Фитопат. 2018;56:89–110. doi: 10.1146/annurev-phyto-080417-050151. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

7. Шольц Дж. Э. Вирусные детерминанты резистентности и восприимчивости. В: Loebenstein G., Carr J., редакторы. Естественные механизмы устойчивости растений к вирусам. Спрингер; Дордрехт, Нидерланды: 2006. стр. 13–43. [Академия Google]

8. Рошон Д., Рубино Л., Руссо М., Мартелли Г.П., Ломмель С. Tombusviridae. В: King AMQ, Adams MJ, Carstens EB, Lefkowitz EJ, редакторы. Таксономия вирусов — девятый доклад Международного комитета по таксономии вирусов. Академическая пресса; Лондон, Великобритания: 2012. стр. 1111–1138. [Google Scholar]

9. Scheets K., White K.A., Rubino L., Martelli G.P., Rochon D.A. Таксономическое предложение ICTV 2015.007a-rP.A.v1.split_Carmovirus. Разделите род Carmovirus (семейство Tombusviridae ) на три новых рода: Alphacarmovirus , Betacarmovirus и Gammacarmovirus . [(по состоянию на 20 мая 2019 г.)]; 2015 г. Доступно в Интернете: https://talk.ictvonline.org/ICTV/proposals/2015.007a-rP.A.v1.split_Carmovirus.pdf

10. Scheets K., Jordan R ., Уайт А., Эрнандес С. Таксономическое предложение ICTV 2014.006b-fPA..v3.Pelarspovirus. В семействе Tombusviridae отнесите 5 ранее не отнесенных видов к новому роду Pelarspovirus 9. 0020 . [(по состоянию на 20 мая 2019 г.)]; 2014 г. Доступно в Интернете: https://talk.ictvonline.org/files/ictv_official_taxonomy_updates_since_the_8th_report/m/plant-official/5847

11. Адамс М.Дж., Кинг А.М., Карстенс Э.Б. Голосование по ратификации таксономических предложений в Международный комитет по таксономии вирусов (2013 г.) Arch. Вирол. 2013;158:2023–2030. doi: 10.1007/s00705-013-1688-5. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

12. Scheets K., Redinbaugh M.G. Инфекционные транскрипты кДНК вируса некротической полоски кукурузы: инфекционность и характеристики трансляции. Вирусология. 2006; 350:171–183. doi: 10.1016/j.virol.2006.02.004. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

13. О Дж.-В., Конг К., Сонг С., Карпентер К.Д., Саймон А.Е. Открытые рамки считывания вируса морщинистости турнепса, участвующие в выражении спутниковых симптомов и несовместимости с Arabidopsis thaliana экотипа Дижон. Мол. Растение-микроб. Взаимодействовать. 1995; 8: 979–987. doi: 10. 1094/MPMI-8-0979. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

14. Zhao Y., DelGrosso L., Yigit E., Dempsey D.A., Klessig D.F., Wobbe K.K. Амино-конец белка оболочки вируса морщинистости турнепса представляет собой фактор AVR, распознаваемый устойчивым арабидопсисом. Мол. Взаимодействие растений и микробов. 2000;13:1015–1018. дои: 10.1094/МПМИ.2000.13.9.1015. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

15. Qu F., Morris T.J. Эффективному заражению Nicotiana benthamiana вирусом кустистого каскадера томата способствует белок оболочки и поддерживает p19 за счет подавления сайленсинга генов. Мол. Взаимодействие растений и микробов. 2002; 15: 193–202. doi: 10.1094/MPMI.2002.15.3.193. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

16. Qu F., Ren T., Morris T.J. Ген белка оболочки вируса морщинистости репы подавляет посттранскрипционное замалчивание генов на ранней стадии инициации. Дж. Вирол. 2003; 77: 511–522. doi: 10.1128/ОВИ.77.1.511-522.2003. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Томас К.Л., Лех В., Ледерер К., Мауле А.Дж. Белок оболочки вируса морщинистости турнепса опосредует подавление сайленсинга РНК у Nicotiana benthamiana . Вирусология. 2003; 306:33–41. doi: 10.1016/S0042-6822(02)00018-1. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Choi C.W., Qu F., Ren T., Ye X., Morris T.J. Функция сайленсинга-супрессора РНК белка оболочки вируса морщинистости турнепса не может быть связана с его взаимодействием с белком TIP Arabidopsis . Дж. Генерал Вирол. 2004; 85: 3415–3420. дои: 10.1099/вир.0.80326-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

19. Cao M., Ye X., Willie K., Lin J., Zhang X., Redinbaugh M.G., Simon A.E., Morris T.J., Qu F. Капсидный белок Вирус морщинистости репы преодолевает два отдельных защитных барьера, облегчая системное перемещение вируса в арабидопсисе. Дж. Вирол. 2010; 84: 7793–7802. doi: 10.1128/ОВИ.02643-09. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Genovés A., Navarro J. A., and Pallás V. Функциональный анализ белков, кодируемых геномом пяти вирусов некротической пятнистости дыни. Дж. Генерал Вирол. 2006; 87: 2371–2380. дои: 10.1099/вир.0.81793-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

21. Martinez-Turiño S., Hernandez C. Ингибирование молчания РНК белком оболочки вируса разрыва цветка пеларгонии: отличия от близкородственных супрессоров. Дж. Генерал Вирол. 2009; 90: 519–525. doi: 10.1099/vir.0.006098-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

22. Meng C., Chen J., Peng J., Wong S.M. Индуцированная хозяином авирулентность мутантного вируса кольцевой пятнистости гибискуса коррелирует со сниженной активностью подавления подавления генов. Дж. Генерал Вирол. 2006; 87: 451–459.. doi: 10.1099/vir.0.81578-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

23. Pérez-Cañamás M., Hernández C. Ключевое значение связывания малых РНК для активности глицин/триптофанового (GW) мотива, содержащего вирусный супрессор подавления РНК. Дж. Биол. хим. 2015; 290:3106–3120. doi: 10.1074/jbc.M114.593707. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

24. Angel C.A., Schoelz J.E. Исследование устойчивости к вирусу кустистости томатов рода Nicotiana показывает, что реакция гиперчувствительности вызывается одним из трех различные вирусные белки. Мол. Взаимодействие растений и микробов. 2013; 26: 240–248. дои: 10.1094/МПМИ-06-12-0157-Р. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

25. Coutts R.H.A., Rigden J.E., Slabas A.R., Lomonosssoff G.P., Wise P.J. Полная последовательность нуклеотидов штамма вируса некроза табака D.J. Gen. Virol. 1991; 72: 1521–1529. doi: 10.1099/0022-1317-72-7-1521. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

26. Molnár A., Havelda Z., Dalmay T., Szutorisz H. и Burgyan J. Полная нуклеотидная последовательность штамма вируса некроза табака DH и гены, необходимые для репликации РНК и вирусное движение. Дж. Генерал Виол. 1997;78:1235–1239. doi: 10.1099/0022-1317-78-6-1235. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

27. Чкуасели Т., Ньюберн Л.Р., Бахшинян Д., Уайт К.А. Стратегии экспрессии белков в вирусе некроза табака-D. Вирусология. 2015; 486:54–62. doi: 10.1016/j.virol.2015.08.032. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

28. Fang L., Coutts R.H. Исследования белка репликазы D p60 вируса некроза табака. ПЛОС ОДИН. 2013;8:e80912. doi: 10.1371/journal.pone.0080912. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

29. Цена У.К. Диапазоны хозяев шести вирусов растений. Являюсь. Дж. Бот. 1940; 27: 530–541. doi: 10.1002/j.1537-2197.1940.tb14714.x. [CrossRef] [Google Scholar]

30. Баско Р., Кюнстлер А., Кирали Л. Репликация и распространение вируса некроза табака в экотипе Arabidopsis thaliana Колумбия: потенциальная система для изучения защитных реакций растений на бессимптомные вирусные инфекции. Акта Физиол. Растение. 2016;38:139. doi: 10.1007/s11738-016-2154-2. [CrossRef] [Google Scholar]

31. Льюис Р.С., Николсон Дж.С. Аспекты эволюции Nicotiana tabacum L. и статус коллекции зародышевой плазмы Nicotiana . Жене. Ресурс. Кроп Эвол. 2007; 54: 727–740. doi: 10.1007/s10722-006-0024-2. [CrossRef] [Google Scholar]

32. Грико Ф., Бургян Дж., Руссо М. Нуклеотидная последовательность РНК вируса кольцевой пятнистости цимбидиума. Нуклеиновые Кислоты Res. 1989;17:6383. doi: 10.1093/нар/17.15.6383. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

33. Рошон Д., Тремейн Дж. Полная последовательность нуклеотидов генома вируса некроза огурца. Вирусология. 1989;169:251–259. doi: 10.1016/0042-6822(89)-5. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

34. Nutter R.C., Scheets K., Panganiban LC, Lommel S.A. Полная последовательность нуклеотидов генома вируса хлоротической крапчатости кукурузы. Нукл. Кислоты рез. 1989; 17:3163–3177. doi: 10.1093/нар/17.8.3163. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

35. Turina M., Maruoka M., Monis J., Jackson A.O., Scholthof K.B. Нуклеотидная последовательность и инфекционность полноразмерного клона кДНК вируса мозаики паникума. Вирусология. 1998;241:141–155. doi: 10.1006/viro.1997.8939. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

36. Riviere C.J., Rochon D.M. Нуклеотидная последовательность и геномная организация вируса некротической пятнистости дыни. Дж. Генерал Вирол. 1990; 71: 1887–1896. doi: 10.1099/0022-1317-71-9-1887. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

37. Лазо Г.Р., Штейн П.А., Людвиг Р.А. Компетентная к трансформации ДНК геномная библиотека Arabidopsis в Agrobacterium . Биотехнология. 1991; 9: 963–967. дои: 10.1038/nbt1091-963. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

38. Сюн З., Ким К.Х., Кендалл Т.Л., Ломмель С.А. Синтез предполагаемой РНК-полимеразы вируса некротической мозаики красного клевера путем сдвига рамки считывания рибосом in vitro. Вирусология. 1993; 193: 213–221. doi: 10.1006/viro.1993.1117. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

39. Hajdukiewicz P., Svab Z. и Maliga P. Небольшое универсальное семейство pPZP из бинарных векторов Agrobacterium для трансформации растений. Завод Мол. биол. 1994;25:989–994. doi: 10.1007/BF00014672. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

40. Carrington J.C., Heaton L.A., Zuidema D., Hillman B.I., Morris T.J. Структура генома вируса морщинистости репы. Вирусология. 1989; 170: 219–226. doi: 10.1016/0042-6822(89)90369-3. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

41. Hearne P.Q., Knorr D.A., Hillman B.I., Morris T.J. Полная структура генома и синтез инфекционной РНК из клонов вируса кустистой карликовости томатов. Вирусология. 1990; 177: 141–151. дои: 10.1016/0042-6822(90)90468-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

42. Кумар С., Стечер Г., Тамура К. MEGA7: Молекулярно-эволюционный генетический анализ версии 7.0 для больших наборов данных. Мол. биол. Эвол. 2016; 33:1870–1874. doi: 10.1093/molbev/msw054. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

43. Angel C.A., Hsieh Y.-C., Schoelz J.E. Сравнительный анализ способности белков томбусвируса P22 и P119 функционировать в качестве детерминант авирулентности у Nicotiana видов. Мол. Взаимодействие растений и микробов. 2011;24:91–99. doi: 10.1094/MPMI-04-10-0089. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

44. Scheets K. Анализ функций генов вируса хлоротической крапчатости кукурузы. Вирус рез. 2016; 222:71–79. doi: 10.1016/j.virusres.2016.04.024. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

45. Паланичелвам К., Коул А.Б., Шабаби М., Шольц Дж.Э. Агроинфильтрация гена VI вируса мозаики цветной капусты вызывает гиперчувствительную реакцию у видов Nicotiana . Мол. Взаимодействие растений и микробов. 2000;13:1275–1279. [PubMed] [Академия Google]

46. Аббинк Т.Е.М., Тьернберг П.А., Бол Дж.Ф., Линторст Х.Дж.М. Хеликазный домен вируса табачной мозаики индуцирует некроз в табаке, несущем N-ген, в отсутствие репликации вируса. Мол. Растение-микроб. Взаимодействовать. 1998; 11:1242–1246. doi: 10.1094/MPMI.1998.11.12.1242. [CrossRef] [Google Scholar]

47. Erickson F., Holzberg S., Calderon-Urrea A., Handley V., Axtell M., Corr C., Baker B. Хеликазный домен белков репликазы ВТМ индуцирует N -опосредованная защитная реакция табака. Завод Ж. 1999;18:67–75. doi: 10.1046/j.1365-313X.1999.00426.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

48. Huang C., Liu Y., Yu H., Yuan C., Zeng J., Zhao L., Tong Z., Tao X. Неструктурный белок NSm вируса пятнистого увядания томата является фактором авирулентности, распознаваемым генами устойчивости табака и томата через различные активные сайты элиситора. Вирусы. 2018;10:660. doi: 10.3390/v10110660. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

49. Daubert S.D., Schoelz J.E., Li D., Shepherd R.J. Выражение симптомов болезни у геномных гибридов вируса мозаики цветной капусты. Дж. Мол. заявл. Жене. 1984;2:537–547. [PubMed] [Google Scholar]

50. Schoelz J.E., Shepherd R.J., Daubert S.D. Регион VI вируса мозаики цветной капусты кодирует детерминанту круга хозяев. Мол. Клетка. биол. 1986; 6: 2632–2637. doi: 10.1128/MCB.6.7.2632. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

51. Scholthof H.B., Scholthof K.-B.G., Jackson A.O. Идентификация детерминант симптомов, специфичных для хозяина вируса кустистой карликовости томата, путем экспрессии отдельных генов из вектора X-вируса картофеля. Растительная клетка. 1995;7:1157–1172. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [Google Scholar]

52. Ван К., Эмплео Р., Нгуен Т.Т.В., Моффет П., Сакко М.А. Вызов гиперчувствительных ответов у Nicotiana glutinosa с помощью супрессора РНК-сайленсингового белка P0 от полеровирусов. Мол. Завод Патол. 2015; 16: 435–448. doi: 10.1111/mpp.12201. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

53. Padgett H.S., Beachy R.N. Анализ штамма вируса табачной мозаики, способного преодолевать N ген-опосредованная устойчивость. Растительная клетка. 1993; 5: 577–586. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

54. deRonde D., Butterbach P., Lohuis D., Hedil M., van Lent J.W.M., Kormelink R. Устойчивость на основе гена Tsw вызывается функциональной РНК Сайленсинг-супрессорный порт вируса пятнистого увядания томатов. Мол. Завод Патол. 2013; 14:405–415. doi: 10.1111/mpp.12016. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

55. Bendahmane A., Kanyuka K., Baulcombe D.C. The 9Ген 0019 Rx из картофеля контролирует отдельные реакции на устойчивость к вирусам и гибель клеток. Растительная клетка. 1999; 11: 781–791. doi: 10.1105/tpc.11.5.781. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

56. Vleeshouwers V.G.A.A., Rietman H., Krenek P., Champouret N., Young C., Oh S.-K., Wang M., Bouwmeester К., Восман Б., Виссер Р.Г.Ф. и др. Эффекторная геномика ускоряет обнаружение и функциональное профилирование генов устойчивости картофеля к болезням и Phytophthora infestans генов авирулентности. ПЛОС ОДИН. 2008 г.: 10.1371/journal.pone.0002875. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

57. Моралес Ф., Кастано М., Калверт Л., Арройав Дж.А. Вирус некротической полоски Furcraea: новый член группы диантовирусов. Дж. Фитопат. 1992; 134: 247–254. doi: 10.1111/j.1439-0434.1992.tb01233.x. [CrossRef] [Google Scholar]

58. Powers J.G., Sit T.L., Heinsohn C., Gerorge C. G., Kim K.-H., Lommel S.A. Белок движения, кодируемый РНК-2 вируса некротической мозаики красного клевера, является вторым супрессором Сайленсинг РНК. Вирусология. 2008; 381: 277–286. doi: 10.1016/j.virol.2008.09.004. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

59. Такэда А., Цукуда М., Мизумото Х., Окамото К., Кайдо М., Мисе К., Окуно Т. РНК-вирус растений подавляет сайленсинг РНК посредством репликации вирусной РНК. EMBO J. 2005; 24: 3147–3157. doi: 10.1038/sj.emboj.7600776. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

60. Мирас М., Сепере Р.Н., Крафт Дж.Дж., Миллер В.А., Арадна М.А., Трунигер В. Межсемейная рекомбинация между вирусами привела к получению нового перевода — усиление элемента РНК, позволяющего сломать сопротивление. Новый Фитол. 2014; 202: 233–246. doi: 10.1111/nph.12650. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

61. Рен Т., Ку Ф., Моррис Т.Дж. Функция гена HRT требует взаимодействия между белком NAC и вирусным капсидным белком для придания устойчивости к вирусу морщинистости репы. Растительная клетка. 2000; 12:1917–1925. doi: 10.1105/tpc.12.10.1917. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

62. Накахара К.С., Масута С. Взаимодействие между супрессорами подавления вирусной РНК и факторами хозяина в иммунитете растений. Курс. мнение биол. растений 2014;20:88–95. doi: 10.1016/j.pbi.2014.05.004. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

63. Тымплин Н., Войне О. Подавление РНК-сайленсинга фитопатогенами: защита, контрзащита и контрзащита. Нац. Преподобный Микробиолог. 2013; 11: 745–759. doi: 10.1038/nrmicro3120. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

64. Sit SL, Lommel S.A. eLS. Джон Уайли и сыновья, ООО; Чичестер, Великобритания: 2015 г. Tombusviridae. [CrossRef] [Google Scholar]

65. Калвер Дж.Н. Сборка и разборка вируса табачной мозаики: детерминанты патогенности и устойчивости. Анну. Преподобный Фитопат. 2002; 40: 287–308. doi: 10.1146/annurev.phyto.40.120301.102400. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

66. Toedt J.M., Braswell E.H., Schuster T.M., Yphantis D.A., Taraporewala Z.F., Culver J.N. Биофизическая характеристика сконструированного мутантного белка оболочки ВТМ, R46G, который вызывает умеренную реакцию гиперчувствительности у Nicotiana sylvestris . Белковая наука. 1999; 8: 261–270. doi: 10.1110/ps.8.2.261. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

67. Дорошевская Т., Депта А. Устойчивость диких видов Nicotiana к различным изолятам PVY. Фитопатология. 2011;59: 9–24. [Google Scholar]

68. Laskowska D., Doroszewska T., Depta A., Kursa K., Olszak-Przybyś H., Czubacka A. Исследование зародышевой плазмы Nicotiana на устойчивость к вирусу пятнистого увядания томатов (TSWV) Эвфитика. 2013;193:207. doi: 10.1007/s10681-013-0921-3. [CrossRef] [Google Scholar]

69. Yuan X., Yan C., Wu Z., Ren F., Zhang H., Baker B., Chen J., Kuang H. Частое усиление и потеря устойчивости к табаку. вирус мозаики у видов Nicotiana . Мол. Растение. 2015; 8: 1813–1815. doi: 10.1016/j.molp.2015.09.001. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

70. Balaji B., Cawly J., Angel C., Zhang Z., Palanichelvam K., Cole A., Schoelz J. Замалчивание группы сопротивления N гены в Nicotiana edwardsonii компрометируют гиперчувствительный ответ на tombusviruses. Мол. Взаимодействие растений и микробов. 2007; 20:1262–1270. doi: 10.1094/MPMI-20-10-1262. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

ОАО Мостовдрев — Фанера

Фанера МР

По ГОСТ 3616.1-96 (комплекс технических стандартов, поддерживаемых Евроазиатским советом по стандартизации, метрологии и сертификации) Фанера МР (фанера влагостойкая) изготавливается с применением карбамидоформальдегидного клея для внутренних работ. (Код ТНВД 4412321000).

Толщина листов фанеры от 4 до 21 мм. Фанеру
МР можно узнать по характерным легким клеевым прослойкам карбамидоформальдегидного клея.

Класс I – можно использовать под прозрачную отделку
Сорт III — имеет больше дефектов. Может применяться для поверхностей с непрозрачной отделкой, изготовления коробчатых и скрытых структур.
Сорт IV – количество дефектов древесины и изготовления соответствует ГОСТ 3916.1

Сорт II – имеет незначительные дефекты и может применяться для поверхностей общего назначения под любой вид отделки, для открытых строительных конструкций, для изготовления опалубки.

III сорт — имеет больше дефектов. Может применяться для поверхностей с непрозрачной отделкой, изготовления коробчатых и скрытых структур.

Сорт IV – количество древесины и заводских дефектов соответствует ГОСТ 3916.1

Фанера МР области применения: Фанера МР традиционно востребована в мебельной промышленности для изготовления корпусной и офисной мебели, корпусных конструкций. Благодаря высокой выносливости и прочности фанера МР стала одной из самых популярных в строительстве и ремонте, для изготовления различных интерьерных конструкций, а также для обшивки стен и потолков.

Применяется для внутренней отделки, укладки пола, в качестве основы под паркет или ламинат, межкомнатных перегородок. Эта фанера используется для производства экологически чистой упаковки, т.е. для производства ящиков, ящиков и поддонов.

Фанера МР упаковывается по видам, сортам, сортам и размерам в пачках по 400 мм. Связки обвязываются двумя поперечными и двумя продольными лентами оберточной пленки. При упаковке на экспорт обсуждается соответствующая упаковка фанеры. Точные варианты упаковки будут зависеть от способа транспортировки продукта. Гарантийный срок хранения нашей продукции составляет 3 года с момента поставки. Основой формирования цен является -Mosty FCA.

Фанера ВБР — фанера крупноформатная с повышенной водостойкостью, изготовленная на фенолформальдегидном клее. Фанера ВБР по ГОСТ 3616.1-96 — фанера с повышенной водостойкостью для внутренних и наружных работ. (Код ТНВД 4412321000) WBR бывает классов III/III, III/IV, IV/IV. Фанеру WBR можно узнать по характерным темным клеевым прослойкам фенолформальдегидного клея.